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        粒徑控制對脂質(zhì)體載藥的重要作用及相關(guān)檢測方法

        粒徑控制對脂質(zhì)體載藥的重要作用及相關(guān)檢測方法
        上海奧法美嘉生物科技有限公司  2021-04-25  |  閱讀:6203

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        粒徑控制對脂質(zhì)體載藥的重要作用及相關(guān)檢測方法

        摘要:脂質(zhì)體作為藥物載體,控制其粒徑大小是必要的。動態(tài)光散射法和單顆粒光學(xué)傳感技術(shù)可分別對亞微米、微米級別的粒徑進行分析,美國藥典中對粒徑分布有明確的規(guī)定。通過實驗驗證了美國PSS公司的Nicomp 380/ZLS激光粒徑檢測儀、AccuSizer 780A光學(xué)粒徑檢測儀的結(jié)合使用,可以對粒徑進行更全面科學(xué)的質(zhì)量控制。

        關(guān)鍵詞:脂質(zhì)體;粒徑分布;檢測方法;USP729PFAT5

         

        一、脂質(zhì)體的簡介

        脂質(zhì)體 (liposome)的藥劑學(xué)定義,是指將藥物包封于類脂質(zhì)雙分子層內(nèi)而形成的微型泡囊體。脂質(zhì)體的主要類型有單層小泡(SUV)、小多層小泡(SMV)、多層小泡(MLV)、大單層小泡(LUV)和巨型多層小泡(GMV)。脂質(zhì)體是首個被成功應(yīng)用于臨床的納米藥物輸送系統(tǒng),脂質(zhì)體的大小和載藥量在藥物的藥代動力學(xué)和藥效學(xué)參數(shù)中起著關(guān)鍵作用。因此,準確和快速的測量脂質(zhì)體的大小是必不可少的新型和有效的給藥系統(tǒng)。

         

        二、脂質(zhì)體粒徑的檢測方法

        脂質(zhì)體的粒徑通常采用動態(tài)光光散射法(Dynamic Light Scattering, DLS)及單顆粒光學(xué)傳感技術(shù)(Single Particle Optical Sensing, SPOS)。動態(tài)光散射法是測定亞微米脂質(zhì)體大小最常用的分析技術(shù),單顆粒光學(xué)傳感技術(shù)(SPOS)用于測量大于1μm的脂質(zhì)體的大小。

         

        三、脂質(zhì)體粒徑的控制

        Maryam Amidi, Markus de Raad等人[1]進行了抗原表達免疫刺激脂質(zhì)體的相關(guān)研究,該研究使用脂質(zhì)體作為人工接種微生物,這些人工微生物可以通過基因編程隨心所欲地產(chǎn)生特定的抗原。將細菌體外轉(zhuǎn)錄和翻譯系統(tǒng)以及編碼模型抗原b-半乳糖苷酶的基因構(gòu)建包埋在多層脂質(zhì)體中。脂質(zhì)體的體積加權(quán)平均直徑和大小分布由單顆粒光學(xué)傳感(AccusizerTM 780, Santa Barbara, California, USA)測定。β-半乳糖苷酶脂質(zhì)體和AnExIL(表達抗原的免疫刺激脂質(zhì)體)制劑的體積加權(quán)平均粒徑約為1.5 μm。研究表明[2],粒徑在20~200nm之間的脂質(zhì)體是局部應(yīng)用藥物通過細胞間滲透途徑進入活表皮的活性載體。

        楊艷芳、謝向陽等人[3]對于粒徑與表面電荷影響脂質(zhì)體體內(nèi)藥物靶向遞送進行了相關(guān)的探討,粒子大小100nm以內(nèi)具有高透膜性,100~200nm具有較高的透膜性。納米粒子的透膜性隨其粒徑的增加而減少,被動轉(zhuǎn)運膜的粒徑臨界值為500nm,大于500nm的粒子很難跨越極性上皮細胞進入循環(huán)系統(tǒng)。粒徑為500nm~10μm的固體顆粒均可被吞噬性細胞所攝取,且細胞吞噬作用隨其粒徑的增大而增強[4,5]

        脂質(zhì)體的粒徑同樣也影響脂質(zhì)體對腫瘤組織的靶向性。脂質(zhì)體的粒徑必須大于10nm, 以避免腎臟濾過效應(yīng)。脂質(zhì)體可以發(fā)生EPR效應(yīng)(enhanced permeability and retention effect,增加的滲透性和保留效應(yīng))的最大粒徑由多個因素決定。作為被動靶向, 其完全依賴于擴散調(diào)節(jié)的藥物運輸機制。Dreher[6]報道, 粒徑為幾百納米的粒子容易在腫瘤組織中累積,獲得EPR效應(yīng)的脂質(zhì)體沉積的粒徑上限為400nm,大于400nm的脂質(zhì)體不能擴散通過腫瘤間隙。腫瘤血管開孔的孔徑在50~100nm,是限制脂質(zhì)體滲透進入腫瘤組織的重要途徑。綜合來說,脂質(zhì)體通過EPR效應(yīng)在腫瘤組織積聚的有效粒徑范圍為10~150nm

         

        四、粒徑控制的重要性

        劑的平均粒徑分布和粒度大小與有效性和安全性有直接關(guān)聯(lián)[7]。在醫(yī)藥行業(yè),注射劑中的大顆粒會伴隨著注射過程進入人體肺部,造成肺部肉芽腫(美國曾經(jīng)發(fā)生過大粒子引起的醫(yī)療事件,這是促成美國藥典委員會對大粒子關(guān)注的起因)。且乳劑中大粒子的存在會加速乳滴的聚集作用,會造成乳滴絮凝,凝結(jié),出現(xiàn)相分離現(xiàn)象。一般來說,乳劑的粒徑保持在0.2~0.5μm可以保持最好的物理穩(wěn)定性[8],且易被人體吸收。而人肺部的毛細血管在4μm~9μm之間,若脂肪乳含有大于5μm的粒子,或者粒子不夠穩(wěn)定,在放置過程中有可能合并成為大于5μm的粒子,就會在肺部發(fā)生栓塞,且大粒子對肝臟產(chǎn)生損傷。因此脂肪乳注射液質(zhì)量控制關(guān)鍵要控制平均粒徑(小于0.5μm)和大于5μm粒子的比例。

         

        五、粒徑的分析

        中國醫(yī)藥工業(yè)研究總院的潘偉祥、劉潔等人[9]利用了美國Particle Sizing Systems公司的Nicomp 380/ZLS激光粒徑檢測儀、AccuSizer 780A光學(xué)粒徑檢測儀對前列地爾注射液配伍實驗中乳粒穩(wěn)定性進行了探討,結(jié)果表明,動態(tài)光散射法適用于測量乳粒的平均粒徑,而光消減-單粒子光學(xué)傳感法是評價大粒子粒徑分布更為有效的方法,因此建議采用2種方法相結(jié)合,從而對乳劑的粒徑進行更全面科學(xué)的質(zhì)量控制(包括平均粒徑和大粒子)。

         

         

        1. Nicomp 380/ZLS某乳劑樣品的光強徑高斯分布譜圖

         

        2. AccuSizer 780對某乳劑樣品分析的粒徑-數(shù)量分布圖

        1顯示的是Nicomp 380/ZLS激光粒徑檢測儀對某乳劑樣品分析的光強徑高斯分布譜圖,由圖1可知該乳劑的平均粒徑約為908nm;圖2顯示的是AccuSizer 780A光學(xué)粒徑檢測儀對某乳劑樣品分析的粒徑-數(shù)量圖譜,可知不同粒徑粒子的分布及其數(shù)量。兩種方法結(jié)合分析,可以更好的控制顆粒的質(zhì)量。

         

        六、美國藥典<USP>對粒徑檢測要求的變化

        200410月,美國藥典在全新的USP<729>章節(jié)中公布了脂肪乳粒度測試要求,方法一采用動態(tài)光散射或者米氏散射原理測試脂肪乳的平均粒徑,規(guī)定強度值(Int-Weight);方法二采用光阻法統(tǒng)計1.8μm-50μm的脂肪乳顆粒體積在油相體積中的比例PFAT5 值不得超過0.05%,有了對尾端大粒子明確的規(guī)定。

        200711USP<729>在方法一中做了變動,對于脂質(zhì)體注射劑中的整體粒徑分布進行了標(biāo)準的規(guī)定,無論乳劑樣品的濃度如何,用于注射乳劑的平均光強粒徑要小于500nm0.5μm。

        2010USP<729>在方法二中延長了測試時間,運行兩次樣品,PFAT5值均不得超過0.05%。

        201311月,USP<729>的最新內(nèi)容規(guī)定脂肪乳乳滴平均粒徑分布采用動態(tài)光散射原理,尾端大于5μm的乳滴(PFAT5)占油相體積比例采用光阻法測定,明確規(guī)定了顆粒粒度分布的檢測方法。


        參考文獻

        [1] Maryam Amidi, Markus de Raad, Daan J. A. Crommelin, etal. Antigen-expressing immunostimulatory liposomes as a genetically programmable synthetic vaccine[J]. Syst Synth Biol, 2011, 5:21-31.

        [2] Egbaria K, Weiner N. Liposomes as a topical drug delivery system[J]. Adv Drug Del Rev 1990; 5:287–300.

        [3] 楊艷芳,謝向陽,楊陽等。粒徑與表面電荷影響脂質(zhì)體體內(nèi)藥物靶向遞送的研究進展 [J]。藥學(xué)學(xué)報, 2013, 48(11)1644-1650。

        [4] Groves E, Dart AE, Covarelli V, et al. Molecular mechanisms of phagocytic uptake in mammalian cells[J]. Cell Mol Life Sci, 2008, 65:1957-1976.

        [5] Champion JA, Mitragotri S. Role of target geometry in phagocytosis[J]. Proc Natl USA, 2006, 103:4930-4934.

        [6] Dreher MR, Liu W, Michelich, CR, et al. Tumor vascular permeability, accumulation, and penetration of macromolecular drug carriers [J]. J Natl Cancer Inst, 2006, 98: 335-344.

        [7] Shibata H, Saito H, Yomota C, et al. Pharmaceutical quality evaluation of lipid emulsions containing PGE1: alteration in the number of large particles in infusion solutions [J]. Int J Pharm, 2009, 378(1): 167-176.

        [8] CU LLAR I, Bull NJ, Forgarini AM, et al. More efficient preparation of parenteral emulsions or how to improve a pharmaceutical recipe by formulation engineering[J]. Che Eng Sci, 2005, 60 (8-9): 2127 -2134.

        [9] 潘偉祥,劉潔,何軍等。前列地爾注射液配伍試驗中乳粒穩(wěn)定性的探討[J]。Chinese J. of New Drugs, 2013, 22 (18) 。


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