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        FluorPen手持式葉綠素?zé)晒鈨x
        FluorPen手持式葉綠素?zé)晒鈨x

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        捷克

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        北京易科泰生態(tài)技術(shù)有限公司

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        第2年

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        FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x用于實(shí)驗(yàn)室、溫室和野外快速測(cè)量植物葉綠素?zé)晒鈪?shù),具有便攜性強(qiáng)、精確度高、性價(jià)比高等特點(diǎn);雙鍵操作,具圖形顯示屏,內(nèi)置鋰電和數(shù)據(jù)存儲(chǔ),廣泛應(yīng)用于研究植物的光合作用、脅迫監(jiān)測(cè)、除草劑檢測(cè)或突變體篩選,還可用于生態(tài)毒理的生物檢測(cè),如通過(guò)不同植物對(duì)土壤或水質(zhì)污染的葉綠素?zé)晒忭憫?yīng),找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測(cè)。FP110配備多種葉夾型號(hào),用于不同的樣品與研究。

        應(yīng)用領(lǐng)域

        適用于光合作用研究和教學(xué),植物及分子生物學(xué)研究,農(nóng)業(yè)、林業(yè),生物技術(shù)領(lǐng)域等。研究?jī)?nèi)容涉及光合活性、脅迫響應(yīng)、農(nóng)藥藥效測(cè)試、突變篩選等。

        · 植物光合特性研究

        · 光合突變體篩選與表型研究

        · 生物和非生物脅迫的檢測(cè)

        · 植物抗脅迫能力或者易感性研究

        · 農(nóng)業(yè)和林業(yè)育種、病害檢測(cè)、長(zhǎng)勢(shì)與產(chǎn)量評(píng)估

        · 除草劑檢測(cè)

        · 教學(xué)

        功能特點(diǎn):

        § 結(jié)構(gòu)緊湊、便攜性強(qiáng),LED光源、檢測(cè)器、控制單元集成于僅手機(jī)大小的儀器內(nèi),重量?jī)H188g

        § 功能強(qiáng)大,是葉綠素?zé)晒饧夹g(shù)的高端結(jié)晶產(chǎn)品,具備了大型熒光儀的所有功能,可以測(cè)量所有葉綠素?zé)晒鈪?shù)

        § 內(nèi)置了所有通用葉綠素?zé)晒夥治鰧?shí)驗(yàn)程序,包括3套熒光淬滅分析程序、3套光響應(yīng)曲線程序、OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)曲線等

        § 高時(shí)間分辨率,可達(dá)10萬(wàn)次每秒,自動(dòng)繪出OJIP曲線并給出26個(gè)OJIP–test參數(shù)

        § FluorPen專業(yè)軟件功能強(qiáng)大,可下載、展示葉綠素?zé)晒鈪?shù)圖表,也可以通過(guò)軟件直接控制儀器進(jìn)行測(cè)量

        § 具備無(wú)人值守自動(dòng)監(jiān)測(cè)功能

        § 內(nèi)置藍(lán)牙與USB雙通訊模塊,GPS模塊,輸出帶時(shí)間戳和地理位置的葉綠素?zé)晒鈪?shù)圖表

        § 配備多種葉夾型號(hào):固定葉夾式(適于實(shí)驗(yàn)室內(nèi)暗適應(yīng)或夜間快速測(cè)量)、分離葉夾式(適用于野外暗適應(yīng)測(cè)量)、探頭式(透明光纖探頭,具備葉片固定裝置,用于非接觸性測(cè)量監(jiān)測(cè)或光適應(yīng)條件下的葉綠素?zé)晒獗O(jiān)測(cè))、用戶定制式等

        § 可選配野外自動(dòng)監(jiān)測(cè)式熒光儀,防水防塵設(shè)計(jì)

        測(cè)量程序與功能

        · Ft:瞬時(shí)葉綠素?zé)晒?/span>,暗適應(yīng)完成后FtF0

        · QY:量子產(chǎn)額,表示光系統(tǒng)II 的效率,等于Fv/Fm(暗適應(yīng)狀態(tài))ΦPSII (光適應(yīng)狀態(tài))。

        · OJIP:快速熒光動(dòng)力學(xué)曲線,用于研究植物暗適應(yīng)后的快速熒光動(dòng)態(tài)變化

        · NPQ:熒光淬滅動(dòng)力學(xué)曲線,用于研究植物從暗適應(yīng)到光適應(yīng)狀態(tài)的熒光淬滅變化過(guò)程。

        · LC:光響應(yīng)曲線,用于研究植物對(duì)不同光強(qiáng)的熒光淬滅反應(yīng)。

        · PAR:光合有效輻射,測(cè)量環(huán)境中植物生長(zhǎng)可以利用的400-700nm實(shí)際光強(qiáng)(限PAR型號(hào))。

        技術(shù)參數(shù)

        · 測(cè)量參數(shù)包括F0、FtFm、Fm、QY、QY_LnQY_Dn、NPQ、Qp、RfdPAR(限PAR型號(hào))、Area、Mo、SmPI、ABS/RC50多個(gè)葉綠素?zé)晒鈪?shù),及3種給光程序的光響應(yīng)曲線、3種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等

        · OJIP–test時(shí)間分辨率為10μs(每秒10萬(wàn)次),給出OJIP曲線和26個(gè)參數(shù),包括F0Fj、FiFm、Fv、VjVi、Fm/F0、Fv/F0Fv/Fm、MoArea、Fix Area、SmSs、N、Phi_PoPsi_o、Phi_EoPhi–Do、Phi_PavPI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC

        · 測(cè)量程序:FtQY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2LC3、PAR(限PAR型號(hào))、Multi無(wú)人值守自動(dòng)監(jiān)測(cè)

        · 葉夾類型:FP110/S固定葉夾式、FP110/D分離葉夾式、FP110/P探頭式、FP110/X用戶定制式

        · PAR傳感器(限PAR型號(hào))80o入射角余弦校正,讀數(shù)單位μmol(photons)/m2.s,可顯示讀數(shù),檢測(cè)范圍400-700 nm

        · 測(cè)量光:每測(cè)量脈沖**0.09μmol(photons)/m2.s10-100%可調(diào)

        · 光化學(xué)光:10-1000μmol(photons)/m2.s可調(diào)

        · 飽和光:**3000μmol(photons)/m2.s,10-100%可調(diào)

        · 光源:標(biāo)準(zhǔn)配置藍(lán)光470nm,可根據(jù)需求配備不同波長(zhǎng)的LED光源

        · 檢測(cè)器:PIN光電二極管,667–750nm濾波器

        · 尺寸大?。撼銛y,手機(jī)大小,134×65×33mm,重量?jī)H188g

        · 存貯:容量16Mb,可存儲(chǔ)149000數(shù)據(jù)點(diǎn)

        · 顯示與操作:圖形化顯示,雙鍵操作,待機(jī)8分鐘自動(dòng)關(guān)閉

        · 供電:可充電鋰電池,USB充電,連續(xù)工作48小時(shí),低電報(bào)警

        · 工作條件:055℃,095%相對(duì)濕度(無(wú)凝結(jié)水)

        · 存貯條件:-1060℃,095%相對(duì)濕度(無(wú)凝結(jié)水)

        · 通訊方式:藍(lán)牙+USB雙通訊模式

        · GPS模塊:內(nèi)置

        · 軟件:FluorPen1.1專用軟件,用于數(shù)據(jù)下載、分析和圖表顯示,輸出Excel數(shù)據(jù)文件及熒光動(dòng)力學(xué)曲線圖,適用于Windows 7及更高操作系統(tǒng)

        操作軟件與實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        產(chǎn)地:捷克

        應(yīng)用案例:

        20174月,美國(guó)國(guó)家航空航天局(NASA)新一代先進(jìn)植物培養(yǎng)器(Advanced Plant Habitat,APH)搭載聯(lián)盟號(hào)MS-04貨運(yùn)飛船抵達(dá)國(guó)際空間站。宇航員使用FluorPen手持儀葉綠素?zé)晒鈨x在其中開展植物生理學(xué)及太空食物種植(growth of fresh food in space)的研究。

        參考文獻(xiàn)

        1. F Dang, et al. 2019. Discerning the Sources of Silver Nanoparticle in a Terrestrial Food Chain by Stable Isotope Tracer Technique. Environmental Science & Technology 53(7): 3802-3810

        2. N Moghimiet al. 2019. New candidate loci and marker genes on chromosome 7 for improved chilling tolerance in sorghum. Journal of Experimental Botany70(12): 3357–3371

        3. M Rafique, et al. 2019. Potential impact of biochar types and microbial inoculants on growth of onion plant in differently textured and phosphorus limited soils. Journal of Environmental Management247: 672-680

        4. P Soudek, et al. 2019. Thorium as an environment stressor for growth of Nicotiana glutinosa plants. Environmental and Experimental Botany164: 84-100

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        6. D Shao, et al. 2019. Physiological and biochemical responses of the salt-marsh plant Spartina alterniflora to long-term wave exposure. Annals of Botany, DOI: 10.1093/aob/mcz067

        7. C Cirillo, et al. 2019. Biochemical, Physiological and Anatomical Mechanisms of Adaptation of Callistemon citrinus and Viburnum lucidum to NaCl and CaCl2 Salinization. Front. Plant Sci. 10:742

        8. T Savchenko, et al. 2019. Waterlogging tolerance rendered by oxylipin-mediated metabolic reprogramming in Arabidopsis. Journal of Experimental Botany70(10): 2919–2932

        9. M Liuet al. 2019. Strong turbulence benefits toxic and colonial cyanobacteria in water: A potential way of climate change impact on the expansion of Harmful Algal Blooms. Science of The Total Environment670: 613-622

        10. PK Tiwari, et al. 2019. Liquid assisted pulsed laser ablation synthesized copper oxide nanoparticles (CuO-NPs) and their differential impact on rice seedlings. Ecotoxicology and Environmental Safety176: 321-329

        11. JA Pérez-Romeroet al. 2018. Atmospheric CO2 enrichment effect on the Cu-tolerance of the C4 cordgrass Spartina densiflora. Journal of Plant Physiology220: 155-166

        12. SK Yadav, et al. 2018. Physiological and Biochemical Basis of Extended and Sudden Heat Stress Tolerance in Maize. Proceedings of the National Academy of Sciences 88(1): 249-263

        13. D Balfagón, et al. 2018. Involvement of ascorbate peroxidase and heat shock proteins on citrus tolerance to combined conditions of drought and high temperatures. Plant Physiology and Biochemistry127: 194-199

        14. JI Vílchezet al. 2018. Protection of Pepper Plants from Drought by Microbacterium sp. 3J1 by Modulation of the Plant's Glutamine and α-ketoglutarate Content: A Comparative Metabolomics Approach. Front. Microbiol. 9:284

        15. MC Sorrentino, et al. 2018. Performance of three cardoon cultivars in an industrial heavy metal-contaminated soil: Effects on morphology, cytology and photosynthesis. Journal of Hazardous Materials351: 131-137

        16. E Niewiadomska, et al. 2018. Lack of tocopherols influences the PSII antenna and the functioning of photosystems under low light. Journal of Plant Physiology223: 57-64

        17. S Singh, et al. 2018. Cadmium toxicity and its amelioration by kinetin in tomato seedlings vis-à-vis ascorbate-glutathione cycle. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology178: 76-84

        18. EL Fry, et al. 2018. Drought neutralises plant–soil feedback of two mesic grassland forbs. Oecologia186(4): 1113–-125

        附:OJIP參數(shù)及計(jì)算公式

        Bckg = background

        Fo: = F50μs; fluorescence intensity at 50 μs

        Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

        Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

        Fm: = maximal fluorescence intensity

        Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

        Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

        Fm / Fo = Fm / Fo

        Fv / Fo = Fv / Fo

        Fv / Fm = Fv / Fm

        Mo = TRo / RC - ETo / RC

        Area = area between fluorescence curve and Fm

        Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

        Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

        N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

        Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

        Phi_o = I - Vj

        Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

        Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

        Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

        ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

        TRo / RC = Mo . (I / Vj)

        ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

        DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

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