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        甩尾痛覺測(cè)試儀37360
        甩尾痛覺測(cè)試儀37360

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        面議

        型號(hào)

        品牌

        產(chǎn)地

        意大利

        樣本

        暫無
        香港友誠生物科技有限公司

        會(huì)員

        |

        第2年

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        生產(chǎn)商

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        甩尾測(cè)痛儀儀器簡(jiǎn)介:

        甩尾測(cè)痛儀主要是用于測(cè)量大、小鼠尾巴部受紅外熱刺激的痛覺閾值。實(shí)驗(yàn)時(shí),當(dāng)動(dòng)物感覺疼痛,尾巴會(huì)輕敲臺(tái)面,內(nèi)置傳感器會(huì)立刻檢測(cè)到,停止計(jì)時(shí)和關(guān)閉光源,即儀器自動(dòng)記錄反應(yīng)時(shí)間和光源強(qiáng)度。數(shù)據(jù)可通過U盤、USB數(shù)據(jù)線等導(dǎo)出。

        甩尾測(cè)痛儀的詳細(xì)介紹

        甩尾測(cè)痛儀主要是用于測(cè)量大、小鼠尾巴部受紅外熱刺激的痛覺閾值。實(shí)驗(yàn)時(shí),當(dāng)動(dòng)物感覺疼痛,尾巴會(huì)輕敲臺(tái)面,內(nèi)置傳感器會(huì)立刻檢測(cè)到,停止計(jì)時(shí)和關(guān)閉光源,即儀器自動(dòng)記錄反應(yīng)時(shí)間和光源強(qiáng)度。數(shù)據(jù)可通過U盤、USB數(shù)據(jù)線等導(dǎo)出。

        甩尾測(cè)痛儀中有一可調(diào)強(qiáng)度的紅外光源,其紅外光主要是通過一拋物面反射鏡聚焦在實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的尾巴上。實(shí)驗(yàn)時(shí),操作人員將實(shí)驗(yàn)動(dòng)物置于儀器上,把動(dòng)物的尾巴放在紅外光源處,接受刺激。

        特征

        儀器自動(dòng)記錄實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)

        精度高,避免人為因素引起的誤差

        包含U盤和軟件

        優(yōu)點(diǎn)可獨(dú)立工作,也可連接電腦使用

        儀器工作臺(tái)表面無突出和遮擋物件

        操作方便,實(shí)驗(yàn)重復(fù)性好

        規(guī)格;

        命令:軟鍵和腳踏板連接電腦:DELTA 9-pin連接頭,USB連線

        數(shù)據(jù)讀?。阂壕э@示

        電源:universal mains 85-264 VAC, 50-60Hz

        打?。何⑿蜔崦舸蛴C(jī)(需另外購買)

        工作溫度:15° - 30° C

        開始:紅外開關(guān)

        聲級(jí):< 70 dB

        紅外強(qiáng)度:10-99級(jí)間可調(diào)

        反應(yīng)時(shí)間:液晶屏顯示,分辨率為0.1s

        校準(zhǔn):紅外熱輻射計(jì)(需另外購買)

        截止時(shí)間:預(yù)置,15 - 60 s間

        文獻(xiàn)

        關(guān)于方法

        - F.E. D’Amour & D.L. Smith: "A Method for Determining Loss of Pain Sensation." J. Pharmacol. Exp. Therap. 72: 74-79, 1941.

        - D.C. Yeomans & H.K. Proudfit: “Characterization of the Foot Withdrawal Response to Noxious Radiant Heat in the Rat”Pain 59: 85-97, 1994.

        涉及疼痛甩尾

        - C. Dawson et alia: “ Dexmedetomidine Enhances Analgesic Action of Nitrous Oxide” Anesthesiology 100 (4): 894?904, 2004

        - P. Tolu et alia: “ Effects of Long-Term Acetyl-L-carnitine Administation in Rats: I. Increased Dopamine Output in Mesocorticolimbic Areas and Protection Toward Acute Stress Exposure” Neuropsychopharmacol. 27 (3): 410-420, 2002

        - R. Nadeson et alia: “ Potentiation by Ketamine of Fentanyl Antinociception. I. An Experimental Study in Rats Showing that Ketamine Administered by Non-Spinal Routes Targets Spinal Cord Antinociceptive Systems” Br. J. Anaesthesia 88 (5): 685?691, 2002

        - L. Jasmin et alia: “ The NK1 Receptor mediates Both the Hyperalgesia and the Resistance to Morphine in Mice Lacking Noradrenaline” PNAS 99 (2): 1029?1034, 2002

        - G.L. Fraser et alia: “ Antihyperalgesic Effects of Opioid Agonists in a Rat Model of Chronic Inflammation” Br. J. Pharmacol. 129: 1668?1672, 2000

        - M. Xu et alia: “ Effects of Radolmidine, a Novel α2- Adrenergic Agonist Compared with Dexmedetomidine in Different Pain Models in the Rat” Anesthesiology 93 (2): 473?481, 2000

        - A. K?ster et alia: “Targeted Disruption of the Orphanin Fq/Nociceptin Gene Increases Stress Susceptibility and Impairs Stress Adaptation In Mice” Neurobiology 96 (18): 10444-10449, 1999

        - I. Sora et alia: “Opiate Receptor Knockout Mice Define μ Receptor Roles in Endogenous Nociceptive Responses and Morphine-Induced Analgesia” Neurobiology 94: 1544-1549, 1997

        - C.T. Dourish et alia: "The Selective CCK-B Receptor Antagonist L-365,260 Enhances Morphine Analgesia and Prevents Morphine Tolerance in the Rat" Europ. J. Pharmacol. 176: 35-44, 1990

        - P.W. Nance & J. Sawinok: "Substance P-Induced Long-Term Blockade of Spinal Adrenergic Analgesia: Reversal by Morphine and Naloxone" J. Pharmacol. Exp. Therap. Vol. 240, No. 3: 972-977,

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