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德國(guó)Ionovation公司生產(chǎn)的Ionovation 電生理分析系統(tǒng)（單細(xì)胞膜片鉗），是該領(lǐng)域zui新的產(chǎn)品之一，該產(chǎn)品克服了傳統(tǒng)膜片鉗的一系列缺點(diǎn)，無(wú)論從產(chǎn)品的技術(shù)含量還是從產(chǎn)品的應(yīng)用領(lǐng)域上來(lái)看，在電生理分析技術(shù)中始終處于ling先的地位，代表著電生理分析技術(shù)發(fā)展的方向，是國(guó)內(nèi)外細(xì)胞電生理分析實(shí)驗(yàn)室shou選實(shí)驗(yàn)儀器。 系統(tǒng)介紹 中文名稱：Ionovation Compact 單細(xì)胞膜片鉗自定義環(huán)境電生理分析系統(tǒng)； Innovation 單細(xì)胞膜片鉗定義環(huán)境中重組分子進(jìn)行電生理分析的可靠工具。這種高度靈活的桌面檢測(cè)系統(tǒng)可適應(yīng)多種實(shí)驗(yàn)條件，目前已經(jīng)被用于對(duì)細(xì)胞膜離子通道、多種動(dòng)物和植物轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白和它們的細(xì)胞器進(jìn)行研究。（詳見(jiàn)參考文獻(xiàn)可案例部分）

產(chǎn)品背景：

細(xì)胞膜離子通道是*古老的功能蛋白之一，廣泛存在于從細(xì)菌到植物到動(dòng)物包括人類在內(nèi)的生物界，是許多基本生物活動(dòng)如電活動(dòng)、離子轉(zhuǎn)運(yùn)和細(xì)胞分泌等的基礎(chǔ)。對(duì)于人類而言，由離子通道參與的功能(如電活動(dòng))是神經(jīng)及心血管等系統(tǒng)生理功能的*基本形式之一。對(duì)離子通道功能調(diào)節(jié)機(jī)制的深入研究是了解其生理學(xué)和生理病理學(xué)意義的關(guān)鍵所在。

膜片鉗技術(shù)是用玻璃微電極吸管把只含1-3個(gè)離子通道、面積為幾個(gè)平方微米的細(xì)胞膜通過(guò)負(fù)壓吸引封接起來(lái)，由于電極頭部與細(xì)胞膜的高阻封接，在電極頭部籠罩下的那片膜事實(shí)上與膜的其他部分從電學(xué)上隔離，因此，此片膜內(nèi)開放所產(chǎn)生的電流流進(jìn)玻璃吸管，用一個(gè)極為敏感的電流監(jiān)視器（膜片鉗放大器）測(cè)量此電流強(qiáng)度，就代表單一離子通道電流。膜片鉗技術(shù)發(fā)展至今，已經(jīng)成為現(xiàn)代細(xì)胞電生理的常規(guī)方法。但是隨著研究的深入，目前發(fā)現(xiàn)傳統(tǒng)膜片鉗主要有以下缺點(diǎn)：

·測(cè)量非常耗時(shí)

·需要高度熟練的操作者來(lái)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)

·需要建立千兆歐姆的封阻，但是千兆歐姆的封阻在測(cè)試時(shí)不穩(wěn)定

·并不是所有離子通道都可以被測(cè)試，一般是配體或者在一側(cè)可以交換緩沖液的才可以被測(cè)量

·膜片鉗無(wú)法對(duì)細(xì)胞器進(jìn)行分析

·在測(cè)量過(guò)程中的細(xì)胞往往形成穿孔

·結(jié)果在穩(wěn)定背景下經(jīng)過(guò)多次測(cè)量形成平均值，測(cè)量值離散度大

Ionovation 單細(xì)胞膜片鉗比傳統(tǒng)膜片鉗的優(yōu)勢(shì)主要在于：

·不需要建立千兆歐姆的封阻

·是wei一一種采用雙層封阻的測(cè)量方式

·可用于檢測(cè)各種細(xì)胞膜上的離子通道、囊泡、配體

·容易實(shí)現(xiàn)對(duì)單個(gè)離子通道進(jìn)行分析檢測(cè)

·可以在膜的兩側(cè)改變條件，形成雙信道進(jìn)行分析

參考文獻(xiàn)

1. Wei? K， Neef A， Van Q， Kramer S， Gregor I， Enderlein J.Quantifying the diffusion of membrane proteins and peptides in black lipid membranes with 2-focus fluorescence correlation spectroscopy.Biophys J. 2013 Jul 16;105(2):455-62. doi: 10.1016/j.bpj.2013.06.004.

2. Weingarth M， Prokofyev A， van der Cruijsen EA， Nand D， Bonvin AM， Pongs O， Baldus M.Structural determinants of specific lipid binding to potassium channels.J Am Chem Soc. 2013 Mar 13;135(10):3983-8. doi: 10.1021/ja3119114. Epub 2013 Mar 4.

3. Theis T， Mishra B， von der Ohe M， Loers G， Prondzynski M， Pless O， Blackshear PJ， Schachner M， Kleene R.Functional role of the interaction between polysialic acid and myristoylated alanine-rich C kinase substrate at the plasma membrane.J Biol Chem. 2013 Mar 1;288(9):6726-42. doi: 10.1074/jbc.M112.444034. Epub 2013 Jan 17.

4. K?stler K， Werz E， Malecki E， Montilla-Martinez M， Rosemeyer H. Nucleoterpenes of thymidine and 2'-deoxyinosine: synthons for a biomimetic lipophilization of oligonucleotides Chem Biodivers. 2013 Jan;10(1):39-61. doi: 10.1002/cbdv.201100338.

5. Schmidt F， Levin J， Kamp F， Kretzschmar H， Giese A， B?tzel K. Single-channel electrophysiology reveals a distinct and uniform pore complex formed by α-synuclein oligomers in lipid membranes. PLoS One. 2012;7(8):e42545. doi: 10.1371/journal.pone.0042545. Epub 2012 Aug 3.

6. Betaneli V， Petrov EP， Schwille P. The role of lipids in VDAC oligomerization. Biophys J. 2012 Feb 8;102(3):523-31. doi: 10.1016/j.bpj.2011.12.049. Epub 2012 Feb

7. Wei? K.， Enderlein J. Lipid Diffusion within Black Lipid Membranes Measured with Dual-Focus Fluorescence Correlation Spectroscopy. Chemphyschem. 2012 Mar;13(4):990-1000.

8. Werz E， Korneev S， Montilla-Martinez M， Wagner R， Hemmler R， Walter C， Eisfeld J， Gall K， Rosemeyer H. Specific DNA Duplex Formation at an Artificial Lipid Bilayer: towards a New DNA Biosensor Technology. Chem Biodivers. 2012; Feb;9(2):272-81.

9. Schmidt F， Levin J， Kamp F， Kretzschmar H， Giese A， B?tzel K. Single-channel electrophysiology reveals a distinct and uniform pore complex formed by α-synuclein oligomers in lipid membranes. PLoS One. 2012;7(8):e42545. doi: 10.1371/journal.pone.0042545. Epub 2012 Aug 3.

10. Betaneli V， Petrov EP， Schwille P. The role of lipids in VDAC oligomerization Biophys J. 2012 Feb 8;102(3):523-31. doi: 10.1016/j.bpj.2011.12.049. Epub 2012 Feb 7.

11. Wei? K.， Enderlein J. Lipid Diffusion within Black Lipid Membranes Measured with Dual-Focus Fluorescence Correlation Spectroscopy. Chemphyschem. 2012 Mar;13(4):990-1000.

12. Werz E， Korneev S， Montilla-Martinez M， Wagner R， Hemmler R， Walter C， Eisfeld J， Gall K， Rosemeyer H. Specific DNA Duplex Formation at an Artificial Lipid Bilayer: towards a New DNA Biosensor Technology. Chem Biodivers. 2012; Feb;9(2):272-81

13. Erika Kovács-Bogdán， J Philipp Benz， Jürgen Soll， Bettina B?lter Tic20 forms a channel independent of Tic110 in chloroplasts BMC Plant Biol. 2011; 11: 133.

14. Honigmann A， Walter C， Erdmann F， Eggeling C， Wagner R. Characterization of horizontal lipid bilayers as a model system to study lipid phase separation. Biophys J. 2010 Jun 16;98(12):2886-94.

15. Schneider R， Etzkorn M， Giller K， Daebel V， Eisfeld J， Zweckstetter M， Griesinger C， Becker S， Lange AThe native conformation of the human VDAC1 N terminus. Angew Chem Int Ed Engl. 2010 Mar 1;49(10):1882-5.

16. Kostka M， H?gen T， Danzer KM， Levin J， Habeck M， Wirth A， Wagner R， Glabe CG， Finger S， Heinzelmann U， Garidel P， Duan W， Ross CA， Kretzschmar H， Giese A. Single-particle characterization of iron-induced pore-forming alpha -synuclein oligomers. J Biol Chem. 2008 Feb 7.

17. van der Laan M， Meinecke M， Dudek J， Hutu DP， Lind M， Perschil I， Guiard B， Wagner R， Pfanner N， Rehling P. Motor-free mitochondrial presequence translocase drives membrane integration of preproteins. Nat Cell Biol. 2007; 9(10):1152-9.

18. Pagliuca C， Goetze TA， Wagner R， Thiel G， Moroni A， Parcej D. Molecular properties of Kcv， a virus encoded K+ channel. Biochemistry. 2007; 46(4):1079-90.

19. Goetze TA， Philippar K， Ilkavets I， Soll J， Wagner R. OEP37 is a new member of the chloroplast outer membrane ion channels J Biol Chem. 2006; 281(26):17989-98. Epub 2006 Apr 19

20. Kovermann P， Truscott KN， Guiard B， Rehling P， Sepuri NB， Muller H， Jensen RE， Wagner R， Pfanner N. Tim22， the essential core of the mitochondrial protein insertion complex， forms a voltage-activated and signal-gated channel Mol Cell. 2002; 9(2):363-73.

21. Meuser D， Splitt H， Wagner R， Schrempf H. Mutations stabilizing an open conformation within the external region of the permeation pathway of the potassium channel KcsA. Eur Biophys J. 2001; 30(5):385-91.

22. Hill K， Model K， Ryan MT， Dietmeier K， Martin F， Wagner R， Pfanner N. Tom40 forms the hydrophilic channel of the mitochondrial import pore for preproteins [see comment] Nature. 1998; 395(6701):516-21.